Pôle Imagerie Photonique Bordeaux Imaging Center - Resp. D. Choquet Plateau de Microscopie Confocale CIM Limoges - Resp. C. Carrion Montpellier RIO Imaging (MRI) - Resp. P. Travo| ---- |  Plateau CRBM optique - Resp. V. GeorgetPlateau DBS-UM2 Optique - Resp. V. DiakouPlateau INM Optique - Resp. H. BoukhaddaouiPlateau IGH Optique - Resp. J. CauPlateau La Gaillarde Optique - Resp. E. JublancPlateau PHIV Optique - Resp. J.L. Verdeil |
Plateau d'Imagerie Optique - Bionanophotonique GES-UMR5650 - Resp. C. GergelyPlateforme de Microscopie Raman EA4203 - Resp. F. Cuisinier Toulouse RIO Imaging (TRI) - Resp. P. Cochard| ---- | Plateau d'Imagerie IFR30: Microscopie Confocale et Microscopie Champ Large - Resp. S. AllartPlateau d'Imagerie IFR31: Microscopie Confocale - Resp. B. KnibiehlerPlateau d'Imagerie IFR109: Microspectrofluorimétrie - Resp. M. MoreauPlateau d'Imagerie IFR109: Microscopie Champ Large TRI - Resp. F. PayrePlateau d'Imagerie IFR109: Microscopie Confocale - Resp. P. CochardPlateau de Vidéo-imagerie Fonctionnelle IPBS - Resp. J. Teissié |
Plateforme d'imagerie photonique multi-échelle ITAV UMS3039 - Resp. J. Rouquette
| Resp. scien. : Dominique Rolin - |
Le Centre de Génomique Fonctionnelle de Bordeaux (CGFB) regroupe 6 plateformes : le Centre de Bioinformatique de Bordeaux (CBiB), le Pôle Protéomique, la plateforme Métabolome Fluxome, la plateforme Génome - Transcriptome, Le Bordeaux Imaging Center (BIC) et La Plate-forme de Biologie Structurale. Ces plates-formes vont continuer à mutualiser du personnel et des équipements au service de la communauté scientifique bordelaise.
Centre de Bioinformatique de Bordeaux (CBiB) | Bordeaux Imaging Center (BIC) |
Plateforme Génome - Transcriptome de Bordeaux Plateforme Métabolome Fluxome de Bordeaux | Plateforme de Biologie Structurale de Bordeaux Pôle Protéomique de Bordeaux |
Institut François Magendie - 146 rue Léo Saignat - 33077 Bordeaux - Site - Responsable : Daniel Choquet - 
05 57 57 40 90
Description : Les activités de la plate-forme d'imagerie photonique se déclinent selon les trois axes suivants : service avec mise à disposition de matériel (microscopes, logiciels d'analyse), Formation et développement de nouvelles techniques d'imagerie. Actuellement, un microscope biphotonique ultra-rapide est en cours de développement. Les approches et techniques développées sont : microscopie de fluorescence plein champ, microscopie confocale, FRAP, FRET, FLIM, FCS, photoactivation.
Spécificités :
- de fortes compétences en imagerie à ultra-haute résolution (techniques de molécules uniques, techniques multi-photon, STED et bientôt PALM)
-l'existence d'une équipe de recherche et développement dédiée à la mise au point et l'implémentation à la biologie de nouvelles technologies d'imagerie -des relations étroites avec un laboratoire de physique (CPMOH) et deux entreprises (Amplitude Systèmes et Roper Scientifique)
- la mise à disposition en routine de techniques (FRET/FLIM/FRAP/FCS) dédiées à l'imagerie du vivant - le développement en cours de techniques d'imagerie corrélatives avec la plate-forme de microscopie électronique.
Equipements : 2 microscopes à épifluorescence, 1 vidéomicroscope FRAP, 2 microscopes confocaux, 3 microscopes confaux multiphoton, 1 microscope confocal par spinning-dsik FRAP FLIM, 1 macroscope, 9 lasers dont 5 femtoseconde et 4 continus, stations d'analyse.
Personnel : 6
Accès : public/privé.
| CHU Dupuytren Limoges - 2 avenue Martin Luther King - 87042 Limoges - site - Responsable : Claire Carrion 05 55 43 59 24 |
Description : Ce plateau fait partie de la plateforme CIM Limoges : Cytométrie, Imagerie et Mathématiques qui a pour objectif de répondre aux besoins des projets de recherche des équipe de l'Universitéde Limoges, offrir des services de R&D, développer des programmes de recherche nationaux et internationaux, collaborer avec des partenaires industriels. La diversité des laboratoires qui composent l'IFR 145 permet à notre service d'acquérir des compétences techniques très diverses dans différents domaines de la biologie. Le plateau de microscopie a des applications en bactériologie, immunologie, hématologie, biologie végétale mais intéragit également avec des équipes de céramiques indutrielles, témoignant de son ouverture. Microscopie confocale : coupes de tissu, cellules fixées ou vivantes, animal ou végétal. Lignées cellulaires et cultures primaires / Adhérantes ou en suspension (lymphocytes B). Bactéries. Localisation - Colocalisation - Exploration 3D et 4D - FRET- Matériaux : Etude de surface (pureté de céramiques, homo ou hétéro-aggrégation de particules...). Analyse d'images.
Equipement : 1 microscope confocal de dernière génération (ZEISS LSM 510, en configuration « META », équipé de 3 lasers, un statif inversé, objectifs à immersion 40X, 63X et 100X et un détecteur spectral) avec platine thermostatée avec incubateur CO2 pour la microscopie sur cellules vivantes. Caméra AxioCAm et filtres DAPI/FITC/cyanine 3, cyanine 5.5 pour vidéomicroscopie. Logiciel d'analyse d'images Volocity (modules de mesure, déconvolution et tracking).
Perspectives : Développements technologiques : partenariats avec XLIM (UMR CNRS 6172, Biophotonique, Université de Limoges). Développement des mathématiques appliquées à l'analyse d'images. Démarches en hygiène et sécurité et en qualité en cours. Intégration dans un nouveau bâtiment hospitalo-universitaire de biologie (prévu 2013).
Personnel : 9
Accès : public/privé. Prestation de service ou projet de collaboration. Tarifs selon appartenance et localisation.
Qualité : Demande de labellisation Ibisa (2010)
 |  - | Site | - Responsable : Pierre Travo - 04 67 61 22 54 |
Plateau CRBM Optique | Plateau DBS-UM2 Optique |
Plateau INM Optique | Plateau IGH Optique |
Plateau La Gaillarde Optique | Plateau PHIV Optique |
Description : La plateforme MRI labellisée Ibisa regroupe 12 plateaux répartis sur 4 IFR (IFR 3, IFR 119, IFR 122, IFR 127 Daphne) dont 6 en optique, 5 en cytométrie, 1 en microscopie électronique, 1 en micrographie RX; 2 plateaux d'imagerie du petit animal lui sont associés (IPABS et IPAM). Elle met a disposition de sa clientèle publique et prviée 63 stations de travail (+ d'infos) . MRI a établi un partenariat avec la plateforme RAM et des relations étroites à avantages réciproques avec Toulouse RIO Imaging et avec la plateforme PICSL de Marseille Luminy.
Certification ISO 9001 version 2000 initiée en 2006. 1er audit juin 2008, 2éme audit en novembre 2008.
Equipements : Imagerie de fluorescence, TIRF, microscopes inversés, imagerie en lumière transmise, station de criblage cellulaire à haut débit, microtomographe RX, trieurs.
Personnel : Des ingénieurs dédiés assurent l'entretien, la maintenance, les évolutions par une veille technologique permanente et l'accompagnement des clients.
Accès : public/privé. Tarifs en ligne, fonctionnement informatisé (réservation sur site).
Qualité : Certification ISO 9001-2008
 | Plateau CRBM Optique - UMR 5237 Centre de Recherche en Biochimie Moléculaire - 1919 route de Mende - 34000 Montpellier - Site - Responsable : Virginie Georget - |
Equipement : 1 station Arrayscan VTI Live, 5 microscopes droit, 4 microscopes inversés, 5 stations d'analyse, logiciel HRM Deconvolution.
Personnel : 2
Accès : public/privé. Tarifs, fonctionnement et réservation en ligne.
 | Plateau DBS-UM2 Optique - MRI-DBS - Bât. 24 - Univ. de Montpellier II - Place Eugène Bataillon - CE091 - 34095 Montpellier cedex 05 - Site - Responsable : Vicky Diakou - |
Equipement : 11 microscopie droit confocal (Leica DM2500), 1 microscope droit à épifluorescence (Leica DMRA2), 1 microscopie inversé automatisé pour imagerie 2D (Axiovert 200 Zeiss), 1 loupe (Olympus MVX10), 1 station d'analyse Parvati, 1 microscope cham plein automatisé (Zeiss Axioimager - Apotome).
Personnel : 2
Accès : public/privé. Tarifs, fonctionnement et réservation en ligne
| Plateau INM Optique - Institut des Neurosciences de Montpellier - 80 rue Augustin Fliche - 34091 Montpellier cedex 5 - Site - Responsable : Hassan Boukhaddaoui - |
Equipement : Plateau dédié aux techniques d'imageries en neurosciences, 4 microscopes à épi fluorescence (Droit Leica DMRB, Droit Zeiss AxioImagerZ1/Apotome, Inverse Zeiss Axiovert, Inverse Zeiss AxioVert 200M), 1 nanozoomer slide scanner, 2 stations d'analyse.
Personnel : 1
Accès : public/privé. Tarifs, fonctionnement et réservation en ligne.
| Plateau IGH Optique - IGH - Institut de Génétique Humaine - Campus CNRS Arnaud de Villeneuve - 141 rue de la Cardonille - 34396 Montpellier Cedex 5 - Site - Responsable : Julien Cau - |
Equipement : 3 microscopes à champ plein automatisés ou semi-automatisé (Leica), 1 macroscope confocal (Leica LS), 1 microscope confocal inversé (Leica SP2 Confocal), 3 stations d'analyse, 1 microsocope champ plein automatisé avec Apotome, 1 microscope cham plein inversé, 1 microscope confocal motorisé, 1 stéréomicroscope/macroscope.
Personnel : 1
Accès : public/privé. Tarifs, fonctionnement et réservation en ligne.
| | Plateau La Gaillarde Optique - UMR 866 Différenciation Cellulaire et Croissance Campus SupAgro - Bât. 22 Pièce n°039 - 2 place Pierre Viala - 34060 Montpellier Cedex 1 - site - Responsable : Elodie Jublanc - 04 99 61 28 23 |
Equipement : 1 microscope inversé confocal, 1 station d'analyse.
Personnel : 1
Accès : public/privé. Tarifs, fonctionnement et réservation en ligne.
| | Plateau PHIV Optique - Campus CIRAD - Bât. 2 - Avenue d'Agropolis - 34398 Montpellier Cedex 5 - site - Responsable : Jean-Luc Verdeil - 04 67 61 58 30 |
Equipement : 1 microscope à fluorescence, 1 microscope multiphotonique, 1 microscope à transmission RTM-Improvision (pour imagerie rapide à très haute résolution en lumière ransmise), 1 station de traitement d'image
Personnel : 1
Accès : public/privé. Tarifs, fonctionnement et réservation en ligne
GES - UMR5650 - CNRS - Université de Montpellier 2 - CC074 - Place Eugène Bataillon - 34095 Montpellier Cedex 05 - site - Responsable : Csilla Gergely - 04 67 14 32 48
Description : Notre plateau d'imagerie optique est conçu pour les études des systèmes biologiques dans milieu liquide et nous fournit des informations complémentaires à différentes échelles. Nous utilisons la microscopie en force atomique pour une imagerie aux résolutions nanométriques mais également pour des mesures des forces : interactions entre molécules, élasticité des cellules. La microscopie multiphotonique nous donne accès à une imagerie 3D et dans le volume des cellules étudiées.
Equipement : - microscope inversé Nikon-TE2000 à épi-fluorescence et en contraste d'interférence différentielle, -microscope en force atomique type MFP3D-Asylum Research monté sur un microscope inversé Olympus à épi-fluorescence et en contraste de phase, - microscope multiphotonique (monté sur un microscope Zeiss) en fluorescence à deux photons et en deuxième harmonique.
Développements : Nous nous efforçons de comprendre les mécanismes de résistance tumorale des cellules cancéreuses aux médicaments anti-tumoraux par l'observation directe de la morphologie cellulaire et de son lien avec le cytosquelette et le comportement des microtubules in vitro et in vivo (travaux en collaboration avec le CRLC- Val d'Aurelle). Nos études récentes par microscopie à force atomique ont révélé des modifications morphologiques et rhéologiques importantes sur des cellules de cancer du sein humain dues à l'effet d'un «traitement» onco-protecteur. Les raisons de ces modifications ont été abordées par des études de microscopie multiphotonique qui nous ont permis de visualiser l'organisation des microtubules au sein de ces cellules. Dans la suite nous développons une imagerie fonctionnelle sur des cellules cancéreuses en réalisant une cartographie AFM de l'activité de récepteurs cellulaires dans la présence des traitements chimiothérapiques. Notre projet majeur sur la microscopie multiphotonique concerne la détection des lésions précancéreuses orales par l'autofluorescence des tissus contenant des fluorophores endogènes naturellement présents dans des tissus. Ces travaux se déroulent en collaboration avec la Faculté d'Odontologie de l'Université Montpellier 1.
Perspectives : Couplage d'une cellule électro-physiologique au microscope multiphotonique pour l'enregistrement optique rapide du potentiel membranaire de neurons par la génération de deuxième harmonique. Couplage d'une tête de mesure Raman au microscope AFM pour faire d'imagerie chimique à haut résolution
Accès : public/privé. Prestation de service ou projet de collaboration.
Personnel : 3
Lab. Biologie Santé et Nanoscience EA4203 - 545 rue du Pr Viala - 34193 Montpellier Cedex 5 - Responsable : Frédéric Cuisinier - 04 67 10 74 31
Description : L'EA 4203 a développé des compétences dans les domaines de la microscopie confocale Raman et de l'histologie des tissus calcifiés non-décalcifiés. Nous avons ainsi pu suivre la répartition intracellulaire de composé anticancéreux dans des cellules vivantes. La microscopie confocale Raman est la seule méthode permettant de suivre la composition chimique de cellules vivante, en plus cette analyse est tri-dimensionnelle. Nous avons également réalisé l'étude de la composition chimique de tissu cancéreux en utilisant ce microscope. Nous réalisons des études histologiques sur l'intégration osseuse de prothèses métallique ou céramique dans le tissu osseux sur des modèles animaux.
Equipement : Microscope confocal Raman de marque WITEC (longueur d'onde du laser : 532nm). A cette longueur d'onde, la résolution latérale est de 130nm et la résolution en profondeur d'un micromètre. Le microscope est équipé d'une caméra EMCCD qui permet de réduire de 10 fois les temps d'acquisition par rapport à une caméra CCD classique. Exemples : -suivi de la diffusion de substance anticancéreuse dans les cellules vivantes et les tissus,
- régénération faciale après exérèse chirurgicale en utilisant des prothèses CADCAM fonctionnalisées avec des cellules souches dentaires.
Perspectives : Pour étudier plus facilement les tissus cancéreux nous devrons prochainement acquérir une platine à grand déplacement (25x25mm)
Accès : public/privé. Pour les partenaires privés nous privilégions le travail sous forme de prestations de services. Avec les laboratoires publics, nous préférons établir des collaborations scientifiques
 |  | - Site - | Responsable : Philippe Cochard 05 61 55 64 25 |
Plateau d'Imagerie IFR40 | Plateau d'Imagerie IFR109 | Plateau d'Imagerie IFR109 |
Plateau d'Imagerie IFR109 | Plateau d'Imagerie IFR150 | Plateau d'Imagerie IFR150 |
| Plateau de Vidéo-imagerie Fonctionnelle IPBS Resp. Justin Teissié Description: imagerie photonique + d'info |
Description : La PF Ibisa Toulouse RIO Imaging regroupe plusieurs plateaux répartis sur les 5 grands pôles de recherche en biologie-santé toulousains IFR 40, IFR 109, IFR 150 et IPBS. Systèmes originaux : Déconvolution (Huygens), microspectrofluorimétrie, micro-injection cellulaire, microscoscopie électronique et cryométhodes, microscopie confocale/déconvolution spectrale (système META ZEISS) cellules vivantes, corrélation de fluorescence (système Confocor), microscopie de fluorescence résolue dans le temps (FLIM). Méthodes classiques : microscopie champ-large, microscopie confocale, cytométrie de flux et microscopie électronique.
Personnel : des ingénieurs spécialisés, dédiés aux équipements, assurent la gestion et la maintenance des équipements, la formation des utilisateurs et leur mise en autonomie sur les machines, la veille technologique et les développements méthodologiques.
Accès : public/privé, prestations et/ou collaboration, accès autonome et/ou formation d'utilisateurs et location des équipements. Elle propose, définit et fournit les équipements et les compétences scientifiques et techniques pour tout projet scientifique en sciences du vivant utilisant les techniques d'imagerie.
Qualité : Plateforme certifiée ISO 9001 pour « Prestation de service, recherche et développement en microscopie photonique, microscopie électronique et cytométrie en flux ».
 | Plateau d'Imagerie IFR40 : Microscopie Confocale et Champ Large - IFR 40 Cenre INRA de Toulouse - Pôle de Biotecgnologie Végétale - 31326 CASTANET-TOLOSAN - Site - Resp. scientifique : Alain Jauneau - 05 62 19 35 37 - Resp. techniques : Alain Jauneau, Cécile Pouzet - 05 62 19 35 37 |
Equipement : 1 STREAK camera, 2 microscopes (Leica SP2), 2 microscopes inversés (Leica)
Personnel : 2
Accès : Public/privé. Réservation en ligne.
 | Plateau d'Imagerie IFR109 : Microscopie Confocale - CBD UMR 5547 - 118 route de Narbonne - Bât 4R3 b3 - 31062 Toulouse cedex 04 - Site - Resp. scientifique : Philippe Cochard - 05 61 55 64 25 - Resp. techniques : Brice Ronsin - 05 62 55 75 93, Aurélie Le Ru - 05 61 55 75 93 |
Equipement : 3 microscopes (Leica SP2, Bi-photon Leica, SP5).
Personnel : 3
Service : accès public/privé. Réservation en ligne.
 | Plateau d'Imagerie IFR109 : Microspectrofluorimétrie - CBD UMR 5547 - 118 route de Narbonne - Bât 4R3 b3 - 31062 Toulouse cedex 04 - Site - Responsable : Marc Moreau - 05 61 55 65 07 |
Equipement : 1 microscope Eclipse 2000e Diaphot
Personnel : 1
Accès : public/privé. Réservation en ligne.
 | Plateau d'Imagerie IFR109 : Microscopie Champ Large - CBD UMR 5547 - Bât 4R3 b3 - 118 route de Narbonne - 31062 Toulouse cedex 04 - Site - Resp. scientifique : François Payre - Resp. technique : Brice Ronsin - 05 61 55 75 93 |
Equipement : 2 microscopes champ large (Leica DMIRE 2, Olympus IX-81)
Personnel : 4
Accès : public/privé. Réservation en ligne.
| Plateau d'imagerie IFR 150 Purpan : Microscopie confocale - INSERM IFR 150 - Bât. B - RDC Couloir rouge - CHU Purpan - Place du Dr Baylac - BP 3028 - 31024 Toulouse cedex 03 - Resp. scientifique : Salvatore Valitutti 05 62 74 83 66 - Resp. technique : Sophie Allart - 05 62 74 45 56 |
 | Plateau d'Imagerie IFR31 : Microscopie Confocale - CHU Rangueil, Bât. L3 - BP 84225 - 31432 Toulouse cedex 4 - Site - Responsable : Bernard Knibiehler - mel pour le plateau - 05 61 32 29 61 |
Equipement : 1 microscope confocal (Zeiss 510)
Personnel : 1
Accès : public/privé
 | Plateau de Vidéo-imagerie Fonctionnelle - IPBS CNRS - 205, route de Narbonne - 31077 Toulouse cedex - Site - Responsable scientifique : Justin Teissié - 05 61 17 58 12 - Responsable opérationnel : Serge Mazères - 05 61 17 58 01 |
Description : Ce plateau est le rassemblement de plusieurs plateaux spécialisés permettant d'approcher des gammes spatiales du nanomètre (FRET) au cm (petit animal) et temporelles de la ns (durée de vie) aux mois (suivi sur l'animal vivant)
Equipement :
- Microspectrofluomètrie (resp. Serge Mazères) : 1 micro spectrofluorimètre pour mesures en fluorescence stationnaire et dynamique, 1 prototype FRAP, spectrofluorimètres.
- Nanofluorimètrie (resp. Laurence Salomé) : 1 vidéo microscope à contrats de Nomarski pour le suivi de particule unique, 2 stations de numérisation et traitement des images (post-traitement et traitement temps réel), 1 vidéo microscope de fluorescence en champ large pour le suivi de molécules fluorescente unique.
- Imagerie cellulaire (resp. Renaud Poincloux) : 1 microscope multiphoton (LSM 710, Zeiss et Chaméléon ULtra II Coherent) avec un équipement en atmosphère contrôlée (CO2 et température), 1 microscope confocal (TSC-SP2 Leica), 1 confocal inversé Zeiss 510 avec équipement en atmosphère contrôlée (CO2 et température), 1 confocal inversé Zeiss 510 (équipement en atmosphère contrôlée en acquisition en 2010), 1 microscope Leica DMIRB à fluorescence (inversé) avec un équipement en atmosphère contrôlée (CO2 et température), 1 microscope Leica DMLA à fluorescence droit.
- Microscopie cellulaire avancée (resp. Justin Teissié) : 1 vidéomicroscope inversé Leica DMIRB de fluorescence rapide (Lhesa) (cadence 3ms), 1 microscope inversé Leica DMIRB à réassignement exhaustif de photons, 1 vidéomicroscope inversé Leitz de fluorescence ultrapide (résolution microseconde).
- Imagerie petit animal (resp. Muriel Golzio) : 1 stéréo microscope Leica à fluorescence avec caméra, 1 Macrofluo Leica (ces 2 postes sont dédiés à l'Imagerie du petit animal par fluorescence avec analyse spectrale et dispose d'un poste d'anesthésie gazeuse, ainsi que d'une armoire d'hébergement), 1 poste imagerie animal entier.
- Imagerie intravitale (resp. Elisabeth Bellard et Jean-Philippe Girard) : 1 microscope intravital Leica, 1 microscope multiphoton (7MP, Zeiss et Chaméléon Ultra II Coherent) dédié à la microscopie intravitale. Un module FLIM est en cours d'acquisition pour compléter les applications in vivo.
Un poste de culture cellulaire est disponible au sein du plateau.
Personnel : 3
Accès : public/privé, prestations et/ou collaboration, accès autonome et/ou formation d'utilisateurs et location des équipements.
Macrofluo - M. Golzio
 | ITAV UMS 3039, Centre Pierre Potier - 141 route d'Espagne (entrée B) - BP 50624 - 31106 Toulouse Cedex 1 - Site - Responsable : Jacques Rouquette |
Description : L'originalité de ce plateau technique est d'utiliser une source d'excitation unique dérivée vers plusieurs utilisations : la microscopie moléculaire et cellulaire, la microscopie intravitale du petit animal (microscopie réalisée directement sur/dans les tissus/organes d'un animal endormi et vivant) et la tomographie à fluorescence de l'animal entier*. Ce partage permet d'envisager dans le futur de rajouter d'autres microscopes pour d'autres utilisations. Ceci dote la plateforme d'une capacité à évoluer. La particularité et la singularité des applications possibles sur ce plateau technique tiennent aux efforts techniques portés à la résolution spatiale dans l'infiniment petit, la résolution temporelle avec une imagerie à grande vitesse, et la possibilité d'observer des phénomènes intracellulaires, voire moléculaires dans l'animal vivant. (*disponible sur le site de l'IPBS, responsable J. Teissie)
Equipement :
- Mutiphoton : microscope Zeiss LSM 510 NLO équipé d'un laser pulsé femto seconde Coherent couplé à 2 microscopes dédiés l'un à l'imagerie moléculaire et cellulaire (microscope inversé avec observation confocale multi-raies, chambre d'observation à atmosphère contrôlée) et l'autre à l'imagerie du petit animal (microscope droit à grande distance de travail).
- Microscope à feuille de lumière équipé de trois lasers continus (491, 532, 595nm) permettant de visualiser en fluorescence une large variété d'échantillons biologiques vivants en 3D avec une résolution spatiale quasi-isotropique et une haute résolution temporelle. - Macrofluo Leica avec camera Roper piloté par logiciel metavue.
- Traitement d'images : Logiciel IMARIS. Salle de culture cellulaire. Microscope de dissection microchirurgicale. Instruments de microchirurgie pour la microscopie multiphotonique intravitale. Appareil d'anesthésie de l'animal. Armoire d'hébergement.
Perspectives/Développements : Ce plateau est ouvert à une utilisation en "Recherche et Développement" pour enrichir les champs d'application de ces techniques d'imagerie, dans l'objectif d'un transfert des développements technologiques pour améliorer les outils d'exploration du vivant, mis à disposition de la communauté scientifique. Cette dimension de Recherche et Développement est facilitée à l'ITAV grâce à l'interaction fructueuse sur un même site de différentes communautés de la recherche. Il permettra ainsi l'interaction entre trois axes de l'ITAV, l'imagerie, les bionanotechnologies et la chimie.
Accès : public/privé. Collaborations et prestations.
